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如何利用µ-Slide Y通道培養(yǎng)載玻片優(yōu)化HUVEC流體培養(yǎng)?

更新時間:2025-03-28   更新時間:2025-03-28   點擊次數(shù):112次

  ibidi µ-Slide y-shaped通道載玻片是研究內(nèi)皮細胞對剪切應力反應的強大工具。此次實驗應用說明提供了一種簡化的方案:在µ-Slide y-shaped中培養(yǎng)人臍靜脈內(nèi)皮細胞(HUVEC),施加受控的剪切應力,并進行免疫熒光染色。在本示例中,我們用Cy5®對HUVEC上的von-Willebrand-Factor因子進行染色,用Alexa Fluor 488®對分化分子簇31進行間接染色,并用DAPI對細胞核進行復染。


  該方案主要包含四個步驟:培養(yǎng)→固定→染色→成像



  1. 培養(yǎng)


  • 無菌條件下,打開Y通道培養(yǎng)載玻片80126置于80003載玻片支架,通道內(nèi)注入200μl HUVEC細胞懸液,移除儲液池液體。



  • 用隨附的蓋子蓋住儲液池口


  • 將載玻片和載玻片支架架放入培養(yǎng)箱中,讓細胞貼壁。之后,向兩個液池中各加入60µl無細胞培養(yǎng)基


  • 繼續(xù)培養(yǎng)≥3小時/過夜


  • 連接ibidi Pump System泵系統(tǒng)(含灌注套件+流體單元+氣壓泵),在培養(yǎng)箱中進行流動培養(yǎng)。


  • 使用11ml培養(yǎng)基時,需在3天內(nèi)更換6ml培養(yǎng)基。


ibidi Pump System泵系統(tǒng)


  2. 固定、透化和封閉


  • 使用細胞培養(yǎng)吸液器吸除所有儲液池中的培養(yǎng)基。緩慢向一側(cè)儲液池中加入1000µl杜氏磷酸鹽緩沖液,同時從對側(cè)的儲液池中吸出液體,以此洗滌細胞。


  • 用約150µl含2%多聚甲醛的PBS固定細胞。20分鐘后,向一側(cè)儲液池中加入約150µl含0.1% Triton® X-100(Fluka)的PBS,同時從對側(cè)的儲液池中吸出通道內(nèi)的液體!確保通道始終保持濕潤!


  • 按照上述方法,用1000µl含1%牛血清白蛋白(BSA)的PBS洗滌細胞。


  3. 染色和封片


  • 預先配制好抗體溶液


  • 將200µl含DAPI的PBS和1% BSA加入通道中,在室溫下孵育30分鐘


  • 按照上述方法,用1000µl含1% BSA的PBS洗滌細胞兩次


  • 將200µl含抗vWF(兔源)的PBS和1% BSA加入通道中,在室溫下孵育45分鐘


  • 按照上述方法,用1000µl含1% BSA的PBS洗滌細胞兩次


  • 將200µl含抗CD31(鼠源)的PBS和1% BSA加入通道中,在室溫下孵育45分鐘


  • 按照上述方法,用1000µl含1% BSA的PBS洗滌細胞兩次


  • 加入200µl 抗鼠(雞源)Alexa Fluor® 488,在室溫下孵育30分鐘


  • 按照上述方法,用1000µl含1% BSA的PBS洗滌細胞兩次


  • 加入200µl抗CD31(鼠源),在室溫下孵育30分鐘


  • 洗滌細胞兩次


  • 按照上述方法,用1000µl含1% BSA的PBS洗滌細胞,然后加入200µl甘油(80%的PBS溶液,添加2% DABCO)進行封片和防淬滅處理*。載玻片可保存約4周。


  4. 固定、透化和封閉


  • 在熒光顯微鏡下使用適當?shù)臑V光片組觀察細胞,并可選擇使用浸油。



  HUVEC細胞;綠色:CD31(血小板內(nèi)皮細胞黏附分子 - 1);紅色:VIII因子(vWF);藍色:細胞核DNA。(蔡司Axiovert 135; Plan-Neofluar 40x/0.75)

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